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        當(dāng)前位置:首頁產(chǎn)品中心島津色譜配件耗材島津色譜柱COSMOSIL Cholester色譜柱

        COSMOSIL Cholester色譜柱

        產(chǎn)品簡介

        COSMOSIL Cholester色譜柱 是反相體系的HPLC柱,膽甾醇鍵合硅膠填料,具有和傳統(tǒng)的烷基鍵合C18、C30硅膠填料一樣的疏水性,但是在相同的分析條件下,Cholester對疏水化合物的立體選擇性好。

        產(chǎn)品型號:
        更新時間:2025-11-21
        廠商性質(zhì):代理商
        訪問量:2120
        詳細(xì)介紹在線留言

        產(chǎn)品描述

        COSMOSIL Cholester色譜柱是反相體系的HPLC柱,膽甾醇鍵合硅膠填料,具有和傳統(tǒng)的烷基鍵合C18、C30硅膠填料一樣的疏水性,但是在相同的分析條件下,Cholester對疏水化合物的立體選擇性好。

        Cholester與C18柱具有相同的疏水性。因此使用Cholester代替C18柱或C30柱時,不需要改變分析條件。與傳統(tǒng)的C18柱相比,Cholester具有更強(qiáng)的選擇性和分離同分異構(gòu)體或結(jié)構(gòu)類似物的能力,它可以很好的代替?zhèn)鹘y(tǒng)C18色譜柱。 

        COSMOSIL Cholester色譜柱

        · 膽甾醇基固定相

        · 使用條件與C18柱相同

        · 提高了立體選擇性和幾何異構(gòu)體的分離度

        · 適用于天然物的分離

        規(guī)格


        色譜柱5μm Cholester
        內(nèi)徑(mm)2.03.04.6102028
        柱長(mm)ALLALLALL20-15025020-100150-250ALL
        出廠溶劑乙腈 / 水 = 60 / 40甲醇 / 水 = 70 / 30甲醇 / 水 = 80/ 20甲醇 / 水 = 70 / 30甲醇 / 水 = 80/ 20
        沖洗方法
        1. 去除色譜柱內(nèi)的緩沖液,鹽,酸的方法:使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。
          例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

        2. 沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法,基線不穩(wěn)時的解決方法

        • 樣本不是蛋白質(zhì)時,使用甲醇或*沖洗。

        • 樣品是蛋白質(zhì)時,使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗

        保存方法
        1. 短期(數(shù)日)保存:
          使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。
          例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

        2. 長期(1個月以上)保存:
          使用后,先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱,再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,保存。

        pH范圍pH2~pH7.5
        最大耐壓20MPa15MPa
        溫度范圍最高可耐60度,建議在20~50度下進(jìn)行分析。
        可使用的溶劑

        除堿溶液和強(qiáng)酸溶液(pH1.5以下)以外都可以使用。(強(qiáng)堿溶液會使硅膠溶化,強(qiáng)酸溶液會使固定相脫落)
        注意點(diǎn):
        溶劑粘度過高會導(dǎo)致壓力上升,請將壓力控制在20Mpa以下。 使用酸性流動相或凝固點(diǎn)高的溶劑后,必須清洗色譜柱。

        注意事項
        • 一般情況下緩沖液濃度為0.005~0.02 mol/L即可。

        • 流動相在使用前一定要通過0.5μm以下的濾膜過濾。

        • 蛋白質(zhì)反相模式分析時,請使用大孔徑色譜柱(孔隙直徑300?) COSMOSIL Protein - R(粒徑5μm)。



        色譜柱2.5μm Cholester
        內(nèi)徑(mm)2.03.0
        柱長(mm)ALLALL
        出廠溶劑乙腈 / 水 = 50 / 50
        沖洗方法
        1. 去除色譜柱內(nèi)的緩沖液,鹽,酸的方法:使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。
          例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

        2. 沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法,基線不穩(wěn)時的解決方法

        • 樣本不是蛋白質(zhì)時,使用甲醇或*沖洗。

        • 樣品是蛋白質(zhì)時,使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗

        保存方法
        1. 短期(數(shù)日)保存:
          使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。
          例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

        2. 長期(1個月以上)保存:
          使用后,先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱,再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,保存。


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